Przedmiot podstawowy 2 290-NB3-2PPOD
Kierunek studiów: Szkoła Doktorska
Poziom kształcenia: studia trzeciego stopnia
Profil studiów: ogólnoakademicki
Forma studiów: stacjonarne
Rodzaj przedmiotu: obowiązkowy
Dziedzina nauk ścisłych i przyrodniczych, dyscyplina nauki biologiczne
Rok studiów: II rok
Liczba godzin dydaktycznych z podziałem na formy prowadzenia zajęć:
wykład - 15 godz.,
Metody dydaktyczne: wykład, konsultacje
Punkty ECTS:
Całkowity nakład pracy studenta: 37 godz.
Nakład pracy studenta związany z zajęciami wymagającymi bezpośredniego udziału nauczyciela: 15 godz., w tym:
a) udział w wykładach: 15 godz.,
b) udział w zajęciach pozawykładowych: 0 godz.,
c) udział w konsultacjach/zaliczeniach/egzaminie: 2 godz.
Praca własna studenta (przygotowanie się do zajęć/zaliczeń/egzaminów): 20 godz.
Rodzaj przedmiotu
Tryb prowadzenia przedmiotu
Koordynatorzy przedmiotu
W cyklu 2024: | W cyklu 2025: |
Efekty kształcenia
Wiedza - student zna i rozumie:
1) podstawy teoretyczne oraz zagadnienia ogólne i szczegółowe, umożliwiające rewizję istniejących paradygmatów w dyscyplinie nauki biologiczne, z zakresu genetyki populacji, ekologii fizjologicznej, mikrobiologii, fizjologii roślin i biologii molekularnej (SD_WG01).
2) współczesne kierunki rozwoju i najnowsze osiągnięcia w dyscyplinie nauki biologiczne, z zakresu genetyki populacji, ekologii fizjologicznej, mikrobiologii, fizjologii roślin i biologii molekularnej (SD_WG03).
Umiejętności - student potrafi:
3) samodzielnie planować proces samokształcenia i działać na rzecz własnego rozwoju w zakresie nauk biologicznych (SD_UU01).
Kryteria oceniania
Egzamin pisemny (pytania otwarte)
Kryteria ocen zgodnie z kryteriami określonymi w §23 ust. 3 Regulaminu studiów UwB przyjętego Uchwałą nr 2527 Senatu UwB z dnia 26
czerwca 2019 r. (Załącznik do Obwieszczenia nr 2/2024 Rektora Uniwersytetu w Białymstoku z dnia 21 maja 2024 r.).
Literatura
Literatura podstawowa:
1. Avise JC. 2008. Markery molekularne, historia naturalna i ewolucja. Wydawnictwa Uniwersytetu Warszawskiego.
2. Taberlet, P., Bonin, A., Zinger, L., & Coissac, E. 2018. Environmental DNA: For biodiversity research and monitoring. Oxford University Press.
3. Hartl DL, Clark AG. 2009. Podstawy genetyki populacyjnej. Wydawnictwa Uniwersytetu Warszawskiego.
4. Paul EA, Clark FE. 2000. Mikrobiologia i biochemia gleb. Wydawnictwo UMCS, Lublin.
5. Singleton P. 2004. Bakterie w biologii, biotechnologii i medycynie. PWN, Warszawa.
6. Fizjologia roślin 2021. Kopcewicz J., Szmidt-Jaworska A. (red.), PWN, Warszawa.
Literatura uzupełniająca:
1. Coates DJ, McArthur SL, Byrne M. 2015. Significant genetic diversity loss following pathogen driven population extinction in the rare endemic Banksia brownii (Proteaceae). Biological Conservation 192: 353-360. https://doi.org/10.1016/j.biocon.2015.10.013
2. Heydel F, Engels JG, Till Feigs J, Vásquez E, Rudolph B, Rohwer JG, Jensen K. 2017. Adaptation to tidal flooding and rapid genetic divergence between a narrow endemic grass species and its widespread congener lead to an early stage of ecological speciation. Perspectives in Plant Ecology, Evolution and Systematics 27: 57-67. https://doi.org/10.1016/j.ppees.2017.05.001
3. Oleńska E, Małek W, Wójcik M, Swiecicka I, Thijs S, Vangronsveld J. 2020. Beneficial features of plant growth-promoting rhizobacteria for improving plant growth and health in challenging conditions: A methodical review. Science of the Total Environment 743, 140682: 1-21. https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2020.140682
4. Oleńska E. 2013. Interakcje roślina-bakteria jako czynnik tolerancji roślin naczyniowych na metale ciężkie [w:] Ciereszko I., Bajguz A. (red.) Różnorodność biologiczna – od komórki do ekosystemu. Rośliny i grzyby w zmieniających się warunkach środowiska. Polskie Towarzystwo Botaniczne Oddział Białostocki, 111-124, ISBN: 978-83-62069-37-8.
5. Han Y., White P. J., Cheng L. 2022. Mechanisms for improving phosphorus utilization efficiency in plants. Annals of Botany, 129(3): 247-258 https://doi.org/10.1093/aob/mcab145
6. Plaxton WC, Tran HT. 2011. Metabolic adaptations of phosphate-starved plants. Plant Physiology 156(3):1006–1015. https://doi.org/10.1104/pp.111.175281
7. Yang S. Y., Lin W. Y., Hsiao Y. M., Chiou, T. J. 2024. Milestones in understanding transport, sensing, and signaling of the plant nutrient phosphorus. The Plant Cell, 36(5): 1504-1523. https://doi.org/10.1093/plcell/koad326
8. Żebrowska E, Milewska M, Ciereszko I. 2017. Mechanisms of oat (Avena sativa L.) acclimation to phosphate deficiency. PeerJ 5:e3989 https://doi.org/10.7717/peerj.3989
9. Ratkiewicz, M., Coissac, E., Świsłocka, M., Czajkowska, M., Kowalczyk, R., Czernik, M., & Taberlet, P. (2024). Winter diet overlap among moose, roe deer and red deer in coniferous and mixed forests depends on snow cover depth. Forest Ecology and Management, 556, 121710. https://doi.org/10.1016/j.foreco.2024.121710
10. Garland et al. 2011. The biological control of voluntary exercise, spontaneous physical activity and daily energy expenditure in relation to obesity: human and rodent perspectives. Journal of Experimental Biology 214, 206-229.
https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21177942/
11. Abreu-Vieira et al. 2015. Integration of body temperature into the analysis of energy expenditure in the mouse. Molecular Metabolism 4, 461-470.
https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC4443293/
12. Fischer et al. 2018. Optimal housing temperature for mice to mimic the thermal environment of humans: an experimental study. Molecular Metabolism 7, 161-170. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC5784327/
Więcej informacji
Dodatkowe informacje (np. o kalendarzu rejestracji, prowadzących zajęcia, lokalizacji i terminach zajęć) mogą być dostępne w serwisie USOSweb: